ОБНМикробиология Microbiology

  • ISSN (Print) 0026-3656
  • ISSN (Online) 3034-5464

Генетическая идентификация микросимбионтов бобового Hedysarum arcticum B. Fedtsch, произрастающего на острове Самойловский в дельте реки Лены (Арктическая зона Якутии)

Код статьи
10.31857/S0026365624030155-1
DOI
10.31857/S0026365624030155
Тип публикации
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 93 / Номер выпуска 3
Страницы
368-373
Аннотация
Из клубеньков бобового растения Копеечник арктический (Hedysarum arcticum B. Fedtsch.), произрастающего на о. Самойловский в дельте реки Лена (Арктическая зона Якутии), выделены штаммы бактерий, отнесенных по результатам секвенирования rrs-гена к родам Rhizobium (сем. Rhizobiaceae) и Mesorhizobium (сем. Phyllobacteriaceae) из пор. Hyphomicrobiales (класс Alphaproteobacteria). Согласно данным филогенетического анализа конкатемеров генов atpD, dnaK, gyrB и rpoB штаммы принадлежат к видам Rhizobium giardinii и Mesorhizobium norvegicum. Показано, что полученные штаммы относятся к факультативным психротрофам, способным расти при 5 и 28°C. Выделенные микросимбионты перспективны для дальнейшего изучения их симбиотической эффективности в отношении других видов кормовых бобовых растений с целью создания высокопродуктивных агрофитоценозов в условиях Крайнего Севера.
Ключевые слова
Арктическая зона Якутии клубеньковые бактерии северные агрофитоценозы Hedysarum arcticum B. Fedtsch
Дата публикации
15.05.2024
Год выхода
2024
Всего подписок
0
Всего просмотров
36

Библиография

  1. 1. Котелина Н. С., Арчегова И. Б., Романов Г. Г., Турубанова Л. П. Особенности природопользования и перспективы природовосстановления на Крайнем Севере России. Екатеринбург: УрО РАН, 1998. 148 с.
  2. 2. Стратегия развития Арктической зоны Российской Федерации и обеспечения национальной безопасности на период до 2035 года. Утверждена Указом Президента РФ № 645 от 26 октября 2020 г. URL: http://kremlin.ru/acts/news/64274
  3. 3. Экологические основы управления продуктивностью агрофитоценозов восточноевропейской тундры / Под ред. Арчегова И. Б., Котелина Н. С., Грунина Л.К и др. Л.: Наука, 1991. 152 с.
  4. 4. Amarger N., Macheret V., Laguerre G. Rhizobium gallicum sp. nov. and Rhizobium giardinii sp. nov., from Phaseolus vulgaris nodules // Int. J. Syst. Bacteriol. 1997. V. 47. P. 996–1006. https://doi.org/10.1099/00207713-47-4-996
  5. 5. Andrews M., Andrews M. E. Specificity in legume-rhizobia symbiosis // Int. J. Mol. Sci. 2017. V. 18. Art. 705. https://doi.org/10.3390/ijms18040705
  6. 6. Helene L. C. F., Dall’Agnol R. F., Delamuta J. R. M., Hungria M. Mesorhizobium atlanticum sp. nov., a new nitrogen-fixing species from soils of the Brazilian Atlantic Forest biome // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2019. V. 69. P. 1800–1806. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.003397
  7. 7. Jarvis B. D.W., Pankhurst C. E., Patel J. J. Rhizobium loti, a new species of legume root nodule bacteria // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 1982. V. 32. P. 378–380. https://doi.org/10.1099/00207713-32-3-378
  8. 8. Kabdullayeva T., Crosbie D. B., Marín M. Mesorhizobium norvegicum sp. nov., a rhizobium isolated from a Lotus corniculatus root nodule in Norway // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2020. V. 70. P. 388–396. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.003769
  9. 9. Kumar S., Stecher G., Li M., Knyaz C., Tamura K. MEGA X: Molecular Evolutionary Genetics Analysis across computing platforms // Mol. Biol. Evol. 2018. V. 35. P. 1547–1549. https://doi.org/10.1093/molbev/msy096
  10. 10. Martens M., Delaere M., Coopman R., De Vos P., Gillis M., Willems A. Multilocus sequence analysis of Ensifer and related taxa // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2007. V. 57. P. 489–503. https://doi.org/10.1099/ijs.0.64344-0
  11. 11. Novikova N., Safronova V. Transconjugants of Agrobacterium radiobacter harbouring sym genes of Rhizobium galegae can form an effective symbiosis with Medicago sativa // FEMS Microbiol. Lett. 1992. V. 93. P. 261–268. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.1992.tb05107.x
  12. 12. Safronova V. I., Kuznetsova I. G., Sazanova A. L. et al. Microvirga ossetica sp. nov., a species of rhizobia isolated from root nodules of the legume species Vicia alpestris Steven // Int. J. Syst. Evol. Microbiol. 2017. V. 67. P. 94–100. https://doi.org/10.1099/ijsem.0.001577
  13. 13. Weir B. S., Turner S. J., Silvester W. D., Park D.-C., Young J. M. Mesorhizobium strains and Rhizobium leguminosarum nodulate native legume genera of New Zealand, while introduced legume weeds asre nodulated by Bradyrhizobium species // Appl. Environ. Microbiol. 2004. V. 70. P. 5980–5987. https://doi.org/10.1128/AEM.70.10.5980-5987.2004
  14. 14. Zhao C. T., Wang E. T., Chen W. F., Chen W. X. Diverse genomic species and evidences of symbiotic gene lateral transfer detected among the rhizobia associated with Astragalus species grown in the temperate regions of China // FEMS Microbiol. Lett. 2008. V. 286. P. 263–273. https://doi.org/10.1111/j.1574-6968.2008.01282.x
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека