ОБНМикробиология Microbiology

  • ISSN (Print) 0026-3656
  • ISSN (Online) 3034-5464

СЕРИНОВЫЙ ВАРИАНТ ВОССТАНОВИТЕЛЬНОГО ГЛИЦИНОВОГО ПУТИ ФИКСАЦИИ СО У АНАЭРОБНОГО ТЕРМОФИЛА PARVIVIRGA HYDROGENIPHILA

Код статьи
S3034546425060069-1
DOI
10.7868/S3034546425060069
Тип публикации
Статья
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 94 / Номер выпуска 6
Страницы
565-572
Аннотация
Parvivirga hydrogeniphila Es71-Z0120 — термофильная бактерия, способная к анаэробному росту в диапазоне 25–70°C (оптимум 47–60°C) и pH 6.0–8.5 (оптимум 6.8–7.2) и использующая молекулярный водород или формиат в качестве доноров электронов, а Fe(III) в качестве акцептора. Геномный анализ выявил наличие генов сериновой ветви восстановительного глицинового пути при отсутствии генов глицинредуктазы. Протеомные исследования продемонстрировали повышенную экспрессию других ключевых ферментов этого пути: формиатдегидрогеназы, метилтетрагидрофолат циклогидролазы, системы расщепления глицина и серингидроксиметилтрансферазы. Скорость автотрофной фиксации углерода составила 0.357 фмоль C/кл. день, что сопоставимо с показателями известных автотрофных микроорганизмов. Полученные результаты указывают на функционирование у P. hydrogeniphila автотрофной ассимиляции CO, причем наиболее вероятным является сериновый вариант восстановительного глицинового пути. Результаты исследования вносят вклад в понимание метаболического разнообразия анаэробных микроорганизмов и расширяют знания о распространении различных механизмов фиксации углерода у микроорганизмов, принадлежащих к новым филогенетическим группам.
Ключевые слова
Parvivirga hydrogeniphila восстановительный глициновый путь автотрофия фиксация CO протеомный анализ серингидроксиметилтрансфераза
Дата публикации
01.06.2025
Год выхода
2025
Всего подписок
0
Всего просмотров
6

Библиография

  1. 1. Aziz R.K., Bartels D., Best A.A., DeJongh M., Disz T., Edwards R.A., Formsma K., Gerdes S., Glass E.M., Kubal M. The RAST Server: Rapid Annotations using Subsystems Technology // BMC Genomics. 2008. V. 9. Art. 75. https://doi.org/10.1186/1471-2164-9-75
  2. 2. Berg I.A. Ecological aspects of the distribution of different autotrophic CO2 fixation pathways // Appl. Environ. Microbiol. 2011. V. 77. P. 1925–1936. https://doi.org/10.1128/aem.02473-10
  3. 3. Bruinsma L., Wenk S., Claassens N.J., Martins Dos Santos V.A.P. Paving the way for synthetic C1-metabolism in Pseudomonas putida through the reductive glycine pathway // Metab. Eng. 2023. V. 76. P. 215–224. https://doi.org/10.1016/j.ymben.2023.02.004
  4. 4. Claassens N.J., Satanowski A., Bysani V.R., Dronsella B., Orsi E., Rainaldi V., Yilmaz S., Wenk S., Lindner S.N. Engineering the reductive glycine pathway: a promising synthetic metabolism approach for C1-assimilation // Adv. Biochem. Eng. Biotechnol. 2022. V. 180. P. 299–350. https://doi.org/10.1007/10_2021_181
  5. 5. Cox J., Neuhauser N., Michalski A., Scheltema R.A., Olsen J.V., Mann M. Andromeda: a peptide search engine integrated into the MaxQuant environment // J. Proteome Res. 2011. V. 10. P. 1794–1805. https://doi.org/10.1021/pr101065j
  6. 6. Kevbrin V.V., Zavarzin G.A. The influence of sulfur compounds on the growth of halophilic homoacetic bacterium Acetohalobium arabaticum // Microbiology (Moscow). 1992. V. 61. P. 563–571.
  7. 7. Khomyakova M.A., Zavarzina D.G., Merkel A.Y., Klyukina A.A., Pikhtereva V.A., Gavrilov S.N., Slobodkin A.I. The first cultivated representatives of the actinobacterial lineage OPB41 isolated from subsurface environments constitute a novel order Anaerosomatales // Front. Microbiol. 2022. V. 13. Art. 1047580. https://doi.org/10.3389/fmicb.2022.1047580
  8. 8. Kulak N.A., Pichler G., Paron I., Nagaraj N., Mann M. Minimal, encapsulated proteomic-sample processing applied to copy-number estimation in eukaryotic cells // Nat. Methods. 2014. V. 11. P. 319–324. https://doi.org/10.1038/nmeth.2834
  9. 9. Mall A., Sobotta J., Huber C., Tschirner C., Kowarschik S., Bačnik K., Mergelsberg M., Boll M., Hügler M., Eisenreich W., Berg I.A. Reversibility of citrate synthase allows autotrophic growth of a thermophilic bacterium // Science. 2018. V. 359. P. 563–567. https://doi.org/10.1126/science. aao2410
  10. 10. Sánchez-Andrea I., Guedes I.A., Hornung B., Boeren S., Lawson C.E., Sousa D.Z., Bar-Even A., Claassens N.J., Stams A.J.M. The reductive glycine pathway allows autotrophic growth of Desulfovibrio desulfuricans // Nat. Commun. 2020. V. 11. Art. 5090. https://doi.org/10.1038/s41467-020-18906-7
  11. 11. Sorokin D.Y., Messina E., La Cono V., Ferrer M., Ciordia S., Mena M.C., Toshchakov S.V., Golyshin P.N., Yakimov M.M. Sulfur respiration in a group of facultatively anaerobic natronoarchaea ubiquitous in hypersaline soda lakes // Front. Microbiol. 2018. V. 9. Art. 2359. https://doi.org/10.3389/fmicb.2018.02359
  12. 12. Tyanova S., Temu T., Cox J. The MaxQuant computational platform for mass spectrometry-based shotgun proteomics // Nat. Protoc. 2016. V. 11. P. 2301–2319. https://doi.org/10.1038/nprot.2016.136
  13. 13. Wolin E.A., Wolin M.J., Wolfe R.S. Methane formation by bacterial extracts // J. Biol. Chem. 1963. V. 238. P. 2882–2888.
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека