ОБНМикробиология Microbiology

  • ISSN (Print) 0026-3656
  • ISSN (Online) 3034-5464

Индукция алкогольдегидрогеназы у дрожжей Yarrowia lipolytica в стрессовых условиях

Код статьи
10.31857/S0026365624060182-1
DOI
10.31857/S0026365624060182
Тип публикации
Статус публикации
Опубликовано
Авторы
Том/ Выпуск
Том 93 / Номер выпуска 6
Страницы
884-888
Аннотация
Впервые показано, что при стрессовых воздействиях у дрожжей Yarrowia lipolytica наряду с антиоксидантными ферментами проявляется активность алкогольдегидрогеназы. При росте на глюкозе в процессе перехода дрожжей из экспоненциальной в стационарную фазу роста, обусловленного исчерпанием глюкозы, обнаружена способность клеток к окислению этанола. В условиях окислительного и теплового стрессов индукция алкогольдегидрогеназы сопряжена с увеличением активности антиоксидантных ферментов, в частности каталазы, супероксиддисмутазы, глюкозо-6-фосфат-дегидрогеназы и глутатион редуктазы. Показано снижение внутриклеточного уровня АТФ и цАМФ у Y. lipolytica при различных стрессовых воздействиях, что коррелирует с увеличением активности антиоксидантных систем и НАД+-зависимой алкогольдегидрогеназы.
Ключевые слова
алкогольдегидрогеназа дрожжи стресс биосинтез
Дата публикации
15.11.2024
Год выхода
2024
Всего подписок
0
Всего просмотров
31

Библиография

  1. 1. Belazzi T. Negative regulation of transcription of the Saccharomyces cerevisiae catalase T (CTT1) gene by cAMP is mediated by a positive control element // EMBO J. 1991. V. 10. P. 585‒592.
  2. 2. Emri T., Forgács K., Pócsi I. Combinatorial stress responses in fungi // Biologia Futura. 2022. V. 73. P. 207 ‒ 217.
  3. 3. Guzikowski A.R., Harvey A.T., Zhang J., Zhu S., Begovich K., Cohn M.H., Wilhelm J.E. Differential translation elongation directs protein synthesis in response to acute glucose deprivation in yeast // Zid. BM. RNA Biol. 2022. V. 19. P. 636 ‒ 649.
  4. 4. Hollenstein D.M., Gérecová G., Romanov N., Ferrari J., Veis J., Janschitz M., Beyer R., Schüller C., Ogris E., Hartl M., Ammerer G., Reiter W . A phosphatase-centric mechanism drives stress signaling response // EMBO Rep. 2021. V. 22. Art. 52476.
  5. 5. Janapala Y., Preiss T., Shirokikh N.E . Control of translation at the initiation phase during glucose starvation in yeast // Int. J. Mol. Sci. 2019. V. 20. Art. 4043.
  6. 6. Kwolek-Mirek M., Bednarska S., Dubicka-Lisowska A., Maslanka R., Zadrag-Tecza R., Kaszycki P. Unbalance between pyridine nucleotide cofactors in the SOD1 deficient yeast Saccharomyces cerevisiae causes hypersensitivity to alcohols and aldehydes // Int. J. Mol. Sci. 2022. V. 24. Art. 659.
  7. 7. Minard K.I., Carroll C.A., Weintraub S.T., Mc-Alister-Henn L. Changes in disulfide bond content of proteins in a yeast strain lacking major sources of NADPH // Free Radic. Biol. Med. 2007. V. 42. P. 106‒117.
  8. 8. Minard K.I., McAlister-Henn L. Sources of NADPH in yeast vary with carbon source // J. Biol. Chem. 2005. V. 280. P. 39890‒39896.
  9. 9. Temple M.D., Perrone G.G., Dawes I.W . Complex cellular responses to reactive oxygen species // Trends Cell Bio. 2005. V. 15. P. 319‒326.
  10. 10. Thevelein J.M. Signal transduction in yeast // Yeast. 1994. V. 10. P. 1753‒1790.
  11. 11. Yaakoub H., Mina S., Calenda A., Bouchara J.P., Papon N. Oxidative stress response pathways in fungi // Cell Mol. Life Sci. 2022. V. 79. Art. 333.
QR
Перевести

Индексирование

Scopus

Scopus

Scopus

Crossref

Scopus

Высшая аттестационная комиссия

При Министерстве образования и науки Российской Федерации

Scopus

Научная электронная библиотека